- Docente: Romana Fato
- Crediti formativi: 8
- SSD: BIO/10
- Lingua di insegnamento: Italiano
- Moduli: Romana Fato (Modulo 1) Concettina Cappadone (Modulo 2) Giovanna Farruggia (Modulo 3)
- Modalità didattica: Convenzionale - Lezioni in presenza (Modulo 1) Convenzionale - Lezioni in presenza (Modulo 2) Convenzionale - Lezioni in presenza (Modulo 3)
- Campus: Bologna
- Corso: Laurea in Biotecnologie (cod. 5976)
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Orario delle lezioni (Modulo 1)
dal 16/09/2024 al 04/12/2024
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Orario delle lezioni (Modulo 2)
dal 14/10/2024 al 17/10/2024
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Orario delle lezioni (Modulo 3)
dal 18/10/2024 al 23/10/2024
Conoscenze e abilità da conseguire
Al termine del corso, lo studente conosce: - i processi biologici a livello molecolare; - i rapporti struttura-funzione delle biomolecole con particolare riguardo alle proteine; - il metabolismo energetico; - una visione integrata di signalling e metabolismi principali; - le basi di biochimica strutturale e di enzimologia; - i principali metodi di dosaggio delle proteine in spettrofotometria; i metodi di separazione elettroforetica e identificazione delle proteine; - l'impiego di protocolli sperimentali per il calcolo dell'attività specifica degli enzimi. Al termine del laboratorio lo studente sa inoltre valutare criticamente i risultati ottenuti tramite la stesura di una relazione riguardante gli esperimenti effettuati.
Contenuti
Modulo 1 (6CFU) docente: Prof. Romana Fato
1. Relazione Struttura e Funzione delle Proteine- Relazione struttura e funzione delle proteine: Emoglobina e mioglobina. Struttura dell'eme. Curve di saturazione per l'ossigeno e cooperatività.
- 2. Fondamenti di Bioenergetica.
- Termodinamica e spontaneità dei processi metabolici: Definizione e significato biologico dell’energia libera; relazione tra energia libera, entropia, entalpia e costante di equilibrio.
- Meccanismi di trasferimento dell’energia: reazioni energeticamente accoppiate
- Molecole biologiche ad alta energia: composti fosforilati ad alta energia e nucleotidi ridotti
- L’ATP ed il potenziale di trasferimento del gruppo fosforico.
- 3. Enzimologia.
- Enzimi: classificazione degli enzimi. La catalisi enzimatica. Energia di attivazione. Struttura e proprietà generali degli enzimi. Cofattori e coenzimi.
- Cinetica enzimatica: Km, Vmax, kcat. L'equazione di Michaelis-Menten. Effetto del pH e della temperatura sull'attività enzimatica.
- Inibizione dell'attività enzimatica: inibizione reversibile competitiva e non competitiva.
- Regolazione dell'attività enzimatica: enzimi allosterici e cooperatività, modulatori positivi e negativi; reversibili modificazioni, irreversibili e covalenti.
- 4. Metabolismo
- Organizzazione generale delle vie metaboliche e loro compartimentazione
- catabolismo e anabolismo: relazione tra vie di degradazione e di biosintesi, i cicli del substrato.
- Definizione della tappa di comando di una via metabolica, meccanismi di controllo e ruolo dell’ATP nella spontaneità delle vie metaboliche.
- Uni direzionalità delle vie metaboliche e regolazione del flusso nelle vie metaboliche.
- 5. Metabolismo degli zuccheri.
- La glicolisi: Il destino del piruvato in condizione aerobiche e anaerobiche; regolazione della glicolisi.
- La via dei pentoso fosfati.
- Gluconeogenesi e metabolismo del glicogeno. Metabolismo del glicogeno: reazioni di degradazione e di biosintesi. Meccanismi di regolazione coordinata della sintesi e della demolizione del glicogeno. Gluconeogenesi: substrati e reazioni della gluconeogenesi. Meccanismi di regolazione della gluconeogenesi.
- Cenni sul metabolismo di altri monosaccaridi (fruttosio, galattosio).
- 6. Il ciclo dell’acido citrico e la fosforilazione ossidativa
- La produzione di acetil-Coenzima A. Il complesso della piruvato deidrogenasi ed i suoi cinque cofattori. Meccanismi di regolazione della piruvato deidrogenasi.
- Ciclo degli acido citrico: reazioni del ciclo, meccanismi di regolazione e interrelazioni con altri metabolismi (ruolo delle reazioni anaplerotiche).
- Trasporto di elettroni e fosforilazione ossidativa: struttura tridimensionale dei trasportatori di elettroni nella catena respiratoria mitocondriale.
- Sintesi di ATP: ruolo del gradiente protonico trans-membrana nella sintesi di ATP. Struttura dell’ATP sintasi.
- Regolazione della fosforilazione ossidativa: fabbisogno energetico cellulare, ruolo dei disaccoppianti nella termogenesi. Ipossia e produzione di specie reattive dell’ossigeno (ROS).
- 7. Metabolismo lipidico.
- Digestione, mobilizzazione e trasporto degli acidi grassi.
- Catabolismo degli acidi grassi: reazioni della β-ossidazione.
- La formazione e l'uso di corpi chetonici.
- Biosintesi degli acidi grassi: reazioni e regolazione. Allungamento e desaturazione degli acidi grassi.
- Cenni sulla biosintesi dei trigliceridi e fosfolipidi.
- Colesterolo, steroidi ed isopreni: biosintesi, regolazione e trasporto.
- 8. Degradazione degli aminoacidi e produzione dell’urea.
- Destino metabolico dei gruppi amminici: reazioni di transaminazione e di deaminazione ossidativa.
- Ciclo dell’urea: localizzazione delle reazioni del ciclo e interconnessioni del ciclo dell’urea con il ciclo dell’acido citrico.
- 9. Cenni di trasduzione del segnale.
- Vie di segnalazione cAMP-e fosfato-inositolo dipendente. Recettori con attività tirosin-chinasica e meccanismi di fosforilazione a cascata.
Modulo 2 (2 CFU) Docenti: Prof. Giovanna Farruggia; Prof Concettina Cappadone
LABORATORIO DI BIOCHIMICA
I 2 crediti del modulo di Laboratorio di Biochimica costituiscono un laboratorio integrato nella attività formativa del Corso di Biochimica. Il laboratorio è collocato all’inizio del corso e introdurrà gli studenti all’apprendimento delle basi dello studio degli enzimi. Gli studenti impareranno a calcolare l’attività specifica di un enzima in un lisato proteico cellulare. Valuteranno i parametri cinetici di un enzima purificato, la dipendenza dell’attività enzimatica dal pH e la specificità per il substrato. In particolare, il laboratorio prevede:
1.Preparazione di un lisato cellulare in tamponi ipotonico e detergente.
2. Determinazione del contenuto proteico del lisato con il metodo di Bradford
3. Elettroforesi su gel di poliacrilamide del lisato cellulare e di proteine standard.
4. Determinazione di Vmax e Km dell’enzima fosfatasi alcalina
5. Determinazione dell’effetto del pH e della specificità sull’attività enzimatica.
6. Determinazione del coefficiente di estinzione molare del NADPH sfruttando la reazione della glucosio 6-fosfato deidrogenasi.
7. Colorazione di vetrini con cellule a diversa istogenesi per evidenziare la presenza di lipidi neutri.
Alla fine del laboratorio è prevista una sessione di analisi dei dati raccolti valutati singolarmente e globalmente. Le modalità di stesura di una relazione scientifica saranno discusse collegialmente partendo dai risultati ottenuti.
Oltre alla parte pratica, si farà una limitata parte teorica riguardante le metodiche di estrazione delle proteine da campioni biologici, l’elettroforesi e la spettroscopia di assorbimento UV-Vis.
Testi/Bibliografia
Moulo 1
Berg, Tymoczko, Stryer "Biochimica" Zanichelli editore
Nelson, Cox "I principi di Biochimica di Lehninger" Zanichelli editore
Garret e Grisham "Biochimica" V edizione Piccinin editore
Biochimica Molecole e metabolismo • Con Mastering Chemistry™ Dean R. Appling - Spencer J. Anthony-Cahill - Christopher K. Mathews Pearson editore
Modulo 2
Per il laboratorio saranno date agli studenti delle schede riguardanti lo svolgimento dei singoli esperimenti. Inoltre sarà fornito tutto il materiale utilizzato nello svolgimento delle lezioni teoriche. Non si richiede nessun testo in particolare.
Metodi didattici
modulo 1: Lezioni frontali
modulo 2:Lavoro individuale in laboratorio e di gruppo per l’analisi dei dati. La frequenza al laboratorio e’ obbligatoria.
“In considerazione delle tipologie di attività e metodi didattici adottati, la frequenza di questa attività formativa richiede lo svolgimento di tutti gli studenti dei Moduli 1 e 2 in modalità e-learning [https://www.unibo.it/it/servizi-e-opportunita/salute-e-assistenza/salute-e-sicurezza/sicurezza-e-salute-nei-luoghi-di-studio-e-tirocinio] e la partecipazione al Modulo 3 di formazione specifica sulla sicurezza e salute nei luoghi di studio. Indicazioni su date e modalità di frequenza del Modulo 3 sono consultabili nella apposita sezione del sito web di corso di studio.”
Modalità di verifica e valutazione dell'apprendimento
La verifica dell'apprendimento al termine del corso si propone di valutare il raggiungimento dei seguenti obiettivi:
Modulo di Biochimica 1
- Conoscere la struttura e funzione delle principali macromolecole biologiche e le nozioni fondamentali di enzimologia.
- Conoscere la bioenergetica cellulare, le principali vie metaboliche e i meccanismi sottesi alla loro regolazione e alla trasduzione del segnale.
- Conoscere i meccanismi molecolari di base dei sistemi viventi, e la logica molecolare della loro regolazione.
Modulo di Biochimica 2
-Conoscenza delle principali tecniche di base per le colture cellulari
-Conoscenza dei principali metodi di dosaggio delle proteine
-Conoscenza dei metodi sperimentali per il dosaggio dell'attività enzimatica
L'esame consiste in una valutazione su una relazione scritta su di una attività di laboratorio del Modulo di Biochimica 2 ed una prova orale per la valutazione del modulo di Biochimica 1. La registrazione su Alma Esami verrà fatta solo dopo il superamento di entrambe le prove.
Modulo di Biochimica1: l'esame consiste in una prova orale, della durata di 20-30 minuti, con tre domande che tenderanno ad accertare la conoscenza teorica da parte dello studente sulla struttura e funzione della macromolecole biologiche, sul metabolismo e sua regolazione.
Modulo di Biochimica 2:Durante tutto il percorso di laboratorio gli studenti saranno seguiti dai docenti titolari dei due moduli e da tutors, con un costante dialogo volto a chiarire sia il percorso analitico effettuato che i singoli esperimenti. LIl superamento dell’esame prevede la presentazione di una relazione, elaborata secondo le modalità presentate nell’ultima giornata del laboratorio, che dovrà essere consegnata entro una settimana dal termine del laboratorio.
La valutazione espressa in 30esimi, concorrera’ al voto finale, determinato come media pesata dei diversi moduli.
Il voto finale del corso sarà determinato come media pesata dei due moduli.
Strumenti a supporto della didattica
Modulo 1 :power point slides
Modulo 2 : laboratorio pratico dotato di spettrofotometri e bagni termostatici. laboratorio informatico con Computer a postazione singola. laboratorio di colture cellulari.
Orario di ricevimento
Consulta il sito web di Romana Fato
Consulta il sito web di Concettina Cappadone
Consulta il sito web di Giovanna Farruggia